Autores
Fiaros, E.V.M. (UFMA) ; Ferreira, M.B.C. (UFMA) ; Teles, A.M. (UFMA) ; Mouchrek, A.N. (UFMA)
Resumo
As plantas de origem medicinal são amplamente importantes deste a antiguidade,
seus efeitos no organismo vem sido estudado desde então, e sua substituição e
combinações com medicamentos sintéticos vem mostrado um excelente resultado. O
presente estudo teve como objetivo analisar e comparar essas ações frete a
bactérias padrões de origem alimentar sendo elas Escherichia coli e Staphylococcus
aureus, observou-se que os extratos obtiveram concentrações inibitórias mínimas
entre 1050 a 9000uL sendo o extrato da Pariri bem mais eficiente, não só neste
resultado, mas em relação a sua atividade antimicrobiana no geral, sendo observado
também sua eficácia no método de difusão de disco, onde comparado com antibióticos
utilizados para combater essas infecções como a Penicilina e Genifilina.
Palavras chaves
Atividade Antimicrobiana; Extratos; Plantas medicinais
Introdução
As antigas civilizações criaram seus competentes sistemas terapêuticos a partir
da diversidade biológica, tendo como base a observação do meio ambiente. O uso
de produtos naturais se deve ao fácil acesso da população as espécies vegetais
disponíveis na biota inserida em um contexto cultural, em que a mesma representa
por vezes opção terapêutica viável para comunidades com escasso recursos de
assistência à saúde (Sharma & Sharma, 2007; Batista & Valença, 2012; Urso et
al., 2016). A Maytenus ilicifolia Mart ex Reissek, conhecida popularmente como
Espinheira Santa ou "Cancorosa", é a única planta medicinal nativa do bioma a
ser conservada pelo banco de germoplasma mantido pela Embrapa Clima Temperado e
integra na relação de plantas medicinais recomendadas para uso pelo Ministério
da Saúde na Relação Nacional de Plantas Medicinais de Interesse do SUS
(RENISUS), cujo uso foi regulamentado pela Agência Nacional de Vigilância
Sanitária, conforme a Resolução Normativa no 5, de 11 de dezembro de 2008
(Mariot & Barbieri, 2010). Na região Nordeste do Brasil, folhas de A. chica são
utilizadas em tatuagens pelos índios devido aos pigmentos carajurina e
carajurona (CORRÊA, 1926; CHAPMAN et al., 1927; ZORN et al., 2001). No Estado do
Maranhão, extratos hidroetanólicos de folhas de A. chica foram utilizados no
tratamento de cálculos renais e da hipertensão arterial sistêmica (PESSOA et
al., 2006). Diversas patologias que afetam a saúde pública são de origem
microbiana, nas últimas décadas, ganharam um destaque preocupante, devido não só
à medidas inadequadas no controle de disseminação, mas principalmente com a
evolução da resistência a antibióticos,que acaba limitando as opções
terapêuticas dos processos infecciosos (RAPP, 2004; WHO, 2015).
Material e métodos
As amostras (Pariri e Espinheira Santa) serão adquiridas no estado do
Maranhão. Serão coletadas amostras mensais durante dezesseis meses. Após
as coletas, as amostras serão conduzidas ao Laboratório de Química e
Microbiologia do Programa de Controle de Qualidade de Alimentos (PCQA),
localizado no Pavilhão Tecnológico do Departamento de Tecnologia Química –
Centro de Ciências Exatas e Tecnologia da UFMA - Campus do Bacanga. Foram
utilizadas duas cepas de bactérias provenientes da “American Type Culture
Collection” (ATCC) doadas pelo Laboratório de Microbiologia do Controle de
Qualidade de Alimentos e Água da Universidade Federal do Maranhão (PCQA-UFMA),
sendo duas Gram-negativas: Escherichia coli (ATCC 25922) e uma Gram-positiva:
Staphylococcus aureus (ATCC 25923).A técnica de disco foi realizada segundo
Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI, 2009) que padroniza os testes
de sensibilidade de antimicrobianos por disco-difusão. Primeiramente foram
preparadas soluções na concentração de 2.000μg/mL dos extratos. As soluções dos
extratos foram preparadas utilizando-se dimetilsufóxido (DMSO) a 1% resultando
nas concentrações de 2000 a 100.000μg/mL. A suspensão microbiana contendo
1,5x108 UFC/mL das cepas (Escherichia coli e Staphylococcus aureus) foram
adicionadas a cada concentração. O controle constituído apenas da solução de
DMSO nas mesmas concentrações testadas foi realizado. Ainda foram reservados
tubos para controle de esterilidade do caldo e de crescimento bacteriano. Logo
após a realização das análises os tubos foram incubados a 35°C por 24 horas.
Após o período de incubação, foi verificada a concentração inibitória mínima dos
óleos e extratos, sendo definida como a menor concentração que visivelmente
inibiu o crescimento bacteriano (ausência de turvação)
Resultado e discussão
Utilizou-se os seguintes antibióticos para comparativo aos extratos: Penicilina
e
Genificina, em cada disco foi adicionado 100µL do extrato. Para a bactéria
Staphylococcus aureus foi visto que o antibiotico que teria melhor eficiência
seria a Genifilina, na qual apresentou um halo de inibição 1,7cm à 2,3cm,
comparando aos extratos que obtiveram halos entre 0,7 a 1,4cm, tendo uma
eficiência não muito boa, sendo o melhor extrato para inibir a bactéria foi o da
Espinheira-Santa, ja para a bactéria Escherichia coli a Penicilina é a que
melhor inibi o crescimento da bactéria onde obteve-se um halo de inibição de 3,2
a 3,5cm, comparando aos halos dos extratos tivemos entre 1,2 a 2,0cm sendo o
extrato da Pariri o mais eficiênte, chegando a um tamanho mais aceitável dos
halos com relação ao antibiótico. A concentração Inibitória Mínima (CIM) obteve-
se valores de 1050uL a 9000uL, sendo o extrato da Pariri mais eficiente frente a
essas bactérias padrões de origem alimentar. ALIGIANIS et al. (2001) propuseram
uma classificação para materiais vegetais com base nos resultados do CIM,
considerando como: forte inibição – CIM até 500 μg/mL; inibição moderada – CIM
entre 600 e 1500 μg/mL e como fraca inibição - CIM acima de 1600 μg/mL. Já para
Sartoratto et al. 2004, uma forte atividade de extratos vegetais seria para
valores de CIM entre 50-500 μg/ml, CIM com atividade moderada entre 600-1500
μg/mL e fraca atividade acima de 1500μg/mL. No entanto, vários autores
encontraram extratos vegetais com atividade tanto para bactérias Gram positivas
como para negativas (KHAN et al. 2009; KUETE et al. 2010; ABD AZIZ et al. 2011;
STEFANOVIC & COMIC, 2012). RIBEIRO et al. (2009) demonstraram que extratos de
folhas de goiabeira, pirarucu e pariri foram ativos contra cepas de ambos os
grupos.
Conclusões
Diante do presente estudo podemos concluir que os extratos tem sim uma boa
eficácia diante das bactérias padrões de origem alimentar, sendo o extrato da
Pariri se mostrando mais eficaz e resistente diante das mesmas, utilizando uma
concentração aceitável na sua atividade.
Agradecimentos
A Universidade Federal do Maranhão (UFMA). A Fundação de Amparo a Pesquisa e ao
Desenvolvimento Científico e Tecnológico do Maranhão (FAPEMA) e ao Laboratório do
Programa de Controle de Qualidade de Águas e Alimetos (PCQA).
Referências
BATISTA, L.M.; VALENÇA, A.M.G. A fitoterapia no âmbito da atenção básica no SUS: realidades e perspectivas. Pesquisa Brasileira em Odontopediatria e Clínica Integrada,v.12, p.293-296, 2012.
SHARMA, H.L.; SHARMA, H.K. Principles of Pharmacology.Ed. Paras Medical Publisher, Hyderabad.2007. 412–414p.
RAPP, R.P. Changing strategies for the management of invasive fungal infections.
Pharmacotherapy, 2004.
MARIOT, M.P.; BARBIERI, R.L. Divergência genética entre acessos de espinheira-santa (Maytenusilicifolia Mart. exReiss. e M. aquifolium Mart.) com base em caracteres morfológicos e fisiológicos. Revista Brasileira de Plantas Medicinais, v.12, p.243-249, 2010.
URSO, V. et al. Medicinal and food plants used by communities living in Mopane woodlands of southern Angola: Results of an ethnobotanical field investigation. Journal of Ethnopharmacol, v.177, p.126-139, 2016.
MABE, K. et al.In vitro and in vivo activities of tea catechinsagainistHelicobacter pylore.Antimicrobial Agents Chemotherapy, v.43, n.7, p.1788-1791. 1999. Disponível em <http://aac.asm.org/content/43/7/1788.full> Acesso em: 02 dez. 2016.
SINGH, B.; DUBEY, M. M. Estimation of triterpenoids from Heliotropiummaifolium Kohen ex Retz in vivo and in vitro: antimicrobial screening. PhytotherapyResearch, v.15, n.3, p.231-234, 2001.
CUNICO, M.M. et al. Contribuição ao estudo da atividade antifúngica de Maytenusilicifolia Mart exReiss., Celastraceae. Revista Brasileira de Farmacognosia, v.12, n.2, p.69-73, 2002.
LORENZI, H.; MATOS, F.J.A. Plantas medicinais no Brasil: nativas e exóticas.ed.Nova Odessa: Instituto Plantarum, 2002. 270 p.
BRANDÃO, M.G.L. et al. Medicinal plants and other botanical products from the Brazilian Official Pharmacopeia. Revistta Brasileira de Farmacognosia, v.16, p.408-420, 2006.
SANTOS, S. C.; MELLO, J. C. P. Taninos. In: SIMÕES, C. M. O.; MELLO, J. C. P.; MENTZ, L. A.; PETROVICK, P. R. Farmacognosia: da planta ao medicamento. 2.ed. Florianópolis: Ed. da UFSC; Porto Alegre: Ed. da UFRGS, 2004. cap.2. p. 29-43.
ZUANAZZI, J. A. S.; MONTANHA, J. A. Flavonoides. In: SIMÕES, C. M. O. (Ed.2)
Farmacognosia: da planta ao medicamento. Florianópolis: Ed. da UFSC; Porto Alegre: Ed. da UFRGS, 2004. cap.23. p.577-614.
CHAPMAN, E.; PERKIN, A.G.; ROBINSON, R. The colouring matters of carajura.
Journal of the Chemical Society, v. 2, p. 3015-3041, 1927.
CORRÊA, P.M. Dicionário das plantas úteis do Brasil e das exóticas cultivadas. Rio de Janeiro: Imprensa Nacional, 1926. p. 31-39.
PESSOA, D. L. R.; CARTÁGENES, M. S.S.; BORGES, A.C. R.; BORGES, M. O. R.;
MEDEIROS, I. A. Avaliação da administração crônica do extrato hidroalcoólico de
Arrabidaea chica Verlot a ratos normotensos. SIMPÓSIO BRASILEIRO DE
PLANTAS MEDICINAIS, 19., 2006, Salvador, 2006. Anais... São Paulo: Sociedade
Brasileira de Plantas Medicinais.
ZORN, B.; GARCIA-PIÑERES, A. J.; CASTRO, V.; MURILLO, R.; MORA, G.;
MERFORT, I. 3-Desoxyanthocyanidins from Arrabidaea chica. Phytochemistry, v.
56, p. 831-835, 2001.
WORLD HEALTH ORGANIZATION (WHO). Antimicrobial resistance. N. 194, 2015.
Disponível em http://www.who.int/mediacentre/factsheets/fs194/en/. Acesso em 28 dez 2015.
KHAN, R.; ISLAM, B.; AKRAM, M.; SHAKIL, S.; AHMAD, S.A.; ALI, S.M., SIDDIQUI
M.; KHAN, A,U. Antimicrobial Activity of Five Herbal Extracts Against Multi Drug
Resistant (MDR) Strains of Bacteria and Fungus of Clinical Origin. Molecules, v. 14, p. 586-597, 2009.
KUETE, V.; POUMALE, H.M.; GUEDEM, A.N.; SHIONO, Y.; RANDRIANASOLO, R.;
NGADJUI, B.T. Antimycobacterial, antibacterial and antifungal activities of the
methanol extract and compounds from Thecacoris annobonae (Euphorbiaceae). S.
Afr. J. Bot., v. 76, p. 536-542, 2010.
ABD AZIZ, S.M.; LOW, C.N.; CHAI, L.C.; ABD RAZAK, S.S.N.; SELAMAT, J.; SON,
R.; SARKER, M.Z.I.; KHATIB, A. Screening of selected Malaysian plants against
several food borne pathogen bacteria. International Food Research Journal, v. 18, n. 3, p. 1195-1201, 2011.
STEFANOVIĆ, O. & COMIE, L. Synergistic antibacterial interaction between Melissa
officinalis extracts and antibiotics. Journal of Applied Pharmaceutical Science, v. 2 n. 01, p. 01-05, 2012.
RIBEIRO, C.M.; SOUZA, G.S.; RIBEIRO, T.A.C.; VIEIRA, A.B.R.; MENDONÇA, C.L.V.; BARBOSA, W.L.R., VIEIRA, J.M.S. Avaliação da atividade antimicrobiana de plantas utilizadas na medicina popular da Amazônia. Infarma, v. 21, n. (1/2), p. 45-49, 2009.